一、莱克多巴胺对鼠的毒性研究（论文文献综述）
李士凯,孙婷,张鑫,孟中华,刘仲[1]（2020）在《2014—2019年济南市市售畜肉中β-受体激动剂含量调查》文中认为目的监测济南市市售畜肉中β-受体激动剂含量,为食品行业监管和暴露风险评估提供依据。方法 2014—2019年,在济南市采集不同市场来源的畜肉及内脏,用固相萃取-超高效液相色谱串联质谱法检测其中的克伦特罗、莱克多巴胺、沙丁胺醇、特布他林,并分析残留水平。结果六年共检测畜肉397份,β-受体激动剂检出率20.15%（80/397）,其中克伦特罗检出率最高为15.62%（62/397）。采自农贸市场的畜肉中β-受体激动剂检出率明显高于采自超市的样品（P<0.01）,羊、牛类样品中β-受体激动剂检出率明显高于猪类样品（P<0.05）,内脏样品中的检出率明显高于肌肉（P<0.05）。结论济南市畜肉中克伦特罗检出较多,牛、羊养殖、屠宰、销售等环节的监管需要加强,牛、羊肉特别是内脏中β-受体激动剂暴露风险较高。
王志昱,张晓瑜,张艺,孙兆鹏,王乙惠,张桂芳[2]（2020）在《烟台市肉品中β-受体激动剂残留及其健康风险评估》文中指出采用高效液相色谱串联质谱法对2016-2018年烟台市肉类样品中4种β-受体激动剂的残留水平进行了检测,并在此基础上对烟台市肉品中的β-受体激动剂的残留风险进行了评估。结果显示,2016年的肉类样品中β-受体激动剂残留的检出率为3.33%,检出的2种β-受体激动剂是沙丁胺醇和特布他林,检出率均为1.67%,最高残留浓度分别为0.82μg/kg和3.63μg/kg;2017年和2018年的肉类样品中未有β-受体激动剂残留检出,烟台人民每天通过食用肉类而摄入的β-受体激动剂兽药的安全限值的平均值小于1。总体表明,烟台市肉品中β-受体激动剂残留损害人体健康的风险较低,但存在违规使用β-受体激动剂的现象,相关部门应加强对牲畜养殖使用β-受体激动剂类药物的监管力度。
何资颖,宋小云,王琤韡[3]（2017）在《莱克多巴胺的危害及防范措施》文中提出针对莱克多巴胺在动物养殖中的危害及其防范措施进行综述。
徐文彬[4]（2016）在《肾上腺受体相关药物对青鳉鱼早期生命阶段的行为毒性研究》文中研究指明肾上腺受体（adrenergic receptor）是与肾上腺素或去甲肾上腺素结合的一类G蛋白耦联受体,遍布中枢及外周神经系统。以肾上腺受体为靶标的相关药物应用广泛,并以原型化合物或者代谢产物的形式进入环境水体,成为重要的污染物之一。青鳉鱼作为目前最常用的模式鱼之一,大多数研究以其胚胎发育、成鱼游泳和社交行为作为化合物毒性评估的指标。本研究以刚孵化青鳉鱼的幼鱼为实验动物,建立一套以幼鱼光暗条件下游泳行为变化评估化合物毒性的检验体系,表明了青鳉鱼具有作为评估化合物神经毒性的应用前景。在此基础上,选用?肾上腺激动剂莱克多巴胺（Ractopamine,RAC）以及?肾上腺受体阻滞剂普萘洛尔（Propranolol,PRO）作为典型的肾上腺受体相关药物,研究这两种药物对青鳉幼鱼行为的影响,以及与运动行为神经发育相关基因的转录水平变化,初步阐明神经行为毒性的相关机制。研究表明,低浓度RAC暴露的青鳉幼鱼游泳速度在黑暗下均显着性上升（约提高7-38mm/min）,而高浓度暴露组中,只有在光照下幼鱼的行为会下降（约4-15mm/min）,青鳉雌雄幼鱼间的游泳速度无性别差异。对于PRO而言,暴露后的青鳉幼鱼在黑暗中的游泳速度随着暴露浓度呈现先升高后降低的趋势,而光照下行为无显着性影响,同时,相同浓度下雌雄幼鱼的游泳速度有性别差异。同样,RAC和PRO暴露后,与中枢神经系统发育相关基因的转录水平也产生显着变化。这些研究结果说明,肾上腺受体类药物可以对模式鱼产生神经毒性,从而为其生态毒性评价提供有力的依据。
党娟,李平,牛治存,王大敏,何国书,冯才伟[5]（2016）在《猪肉组织及尿液中莱克多巴胺的快速检测》文中进行了进一步梳理为实现猪肉组织中莱克多巴胺残留大量样本的快速检测,选用莱克多巴胺酶联免疫吸附（ELISA）、化学发光微粒子免疫（CMIA）检测试剂盒对猪肉、猪肝和尿液3种样品中莱克多巴胺残留量进行检测,并与国家标准检测气相色谱-质谱法（GC-MS）进行比较。结果表明:ELISA、CMIA这2种试剂盒对猪肉、猪肝、尿液样品在莱克多巴胺0.5μg/kg和1.0μg/kg 2个水平的平均回收率达90.4%103.4%,变异系数均小于10%;对猪肉、猪肝和尿液3种样品的最低检测限分别为0.28μg/kg、0.33μg/kg和0.12μg/kg,0.45μg/kg、0.50μg/kg和0.20μg/kg;2种试剂盒与GC-MS检测实际样品的判断结果一致,且检测时间短,仅需少量仪器,检测准确度高,适合大批量样品检测。
刘啊敏[6]（2016）在《基于二聚人工抗原的β-兴奋剂多残留免疫检测技术研究》文中认为β-受体激动剂分为两大类:苯胺型类和苯酚型类。其中克伦特罗（Clenbuterol,CLE）,属于苯胺型类β-受体激动剂;而莱克多巴胺（ractopamine,RAC）,属于苯酚型类β-受体激动剂。将其作为动物的饲料添加剂,能显着提高饲料的转化率和瘦肉转化率。但其在动物体内的残留,会通过食物链进入到人体内,从而危害人类健康。它们也因此在全球范围内被禁用。本论文利用酶联免疫吸附法（ELISA）和胶体金免疫层析法（CGIA）建立了对β-受体激动剂多残留免疫检测的技术。获得的结果如下:1、以对羟基苯甲醛与硝基甲烷为起始物,并结合兰尼镍还原法,从头合成莱克多巴胺氨基衍生物,即RAC-NH2。以此生成物为起始物,与克伦特罗一样进行重氮化反应,分别合成出RAC-HSA、RAC-BSA、CLE-HSA和CLE-BSA。在此基础上,将RAC-NH2和CLE按照一定摩尔比混合,进行重氮化反应,通过紫外和SDS-PAGE鉴定,分别合成出免疫原CLE-HSA-RAC和包被原CLE-BSA-RAC。2、以合成出的CLE-HSA-RAC做为免疫原,采用常规免疫方法进行免疫小鼠,综合效价和灵敏度两个方面,选择2号小鼠进行冲击免疫,进行细胞融合试验。经过三轮亚克隆后,得到3A2和4D8两株稳定分泌抗CLE-RAC的细胞株,其中4D8这株细胞株分泌的单抗,对CLE-RAC的灵敏度最好,IC50值为0.325±0.021ng/mL,且有64000的效价。因此选择4D8细胞株注入小鼠体内,进行诱生腹水。3、以CLE-BSA-RAC人工抗原和CLE-RAC单克隆抗体（4D8）建立了检测CLE和RAC的间接竞争ELISA方法。此方法检测CLE和RAC时的IC50值为0.77ng/mL,最低检测限IC10为0.14 ng/mL。对克伦特罗、莱克多巴胺、马布特罗的交叉反应率很高（CR>96%）。同时对西布特罗、溴布特罗、马贲特罗、西玛特罗、班布特罗和克伦普罗也有一定的特异性（17%<CR<85%）,实现了多残留检测。对其余的几种受体激动剂,没有交叉反应（CR<0.1%）。在实际样品检测时,猪尿、猪肉、猪肝和饲料的最低检测限分别是0.302、0.603、0.804和12.42ng/mL。而最低定量限则分别为:0.518、0.858、1.152和20.583 ng/mL。板内回收率为78%-118.00%,以及板间回收率为84.00%-114.00%。板内变异系数小于14.04%,板间变异系数小于7.69%。利用LC-MS/MS法验证,此方法是可靠的。4、采用柠檬酸钠还原法,制备了CLE-RAC胶体金标记抗体,同时成功制备出胶体金试纸条。肉眼对CLE和RAC等9种β-兴奋剂类药物的检测限可以达到5 ng/mL的水平,与前面结果icELISA结果一致,对β-兴奋剂类药物特异性较高,实现了多残留检测。同时检测时间较短,适合现场检测。本论文采用杂交瘤细胞技术,制备出CLE-RAC单抗,并建立了icELISA法和金标试纸条检测技术,为CLE和RAC等β-受体激动剂多残留提供了可靠的检测方法。
任琳[7]（2016）在《肾上腺受体相关药物对斑马鱼的毒性研究》文中研究说明肾上腺受体（adrenergic receptor）是与肾上腺素或去甲肾上腺素结合的一类G蛋白偶联受体,具有复杂的生理作用,使其成为多种药物的靶位点。相关药物应用广泛,并以母体化合物或者代谢产物的形式进入环境水体,从而导致可能的生态毒性。在本研究中,选择?1肾上腺受体阻滞剂莫西赛利（Moxisylyte,MOX）、?肾上腺受体阻滞剂普萘洛尔（Propranolol,PRO）以及?激动剂莱克多巴胺（Ractopamine,RAC）作为典型的肾上腺受体相关药物,以斑马鱼为实验动物,在确定上述药物胚胎发育毒性的基础上,研究了其对斑马鱼行为的影响,并初步阐明神经行为毒性的相关机制。此外,由于心血管系统可能是肾上腺受体靶标药物的主要效应器官,研究了此类化合物对斑马鱼幼鱼心血管系统的影响。研究表明,MOX在1-625?g/L浓度范围内可以引起斑马鱼胚胎孵化时间延长,畸形率升高,而相同暴露浓度下的PRO和RAC则分别导致畸形率升高和孵化时间延长。对于行为毒性而言,MOX暴露后,斑马鱼幼鱼的运动速度上升,与对照相比有显着差异。PRO暴露组中,最低浓度时斑马鱼幼鱼的运动速度略有上升,但随着浓度上升,其运动速度下降,且与对照组有显着差异。而在RAC暴露组中,斑马鱼幼鱼的游泳速度随着暴露浓度呈现先升高后降低的趋势。同时,肾上腺受体靶标药物均能对神经系统相关基因的转录水平产生影响,乙酰胆碱酯酶酶活也与相应基因转录水平的变化趋势相一致。此外,MOX暴露导致斑马鱼血管直径下降,而血流量与心率则有显着上升。而PRO暴露后,血管直径、血流量和心率在各暴露浓度下均有下降趋势。RAC的暴露导致血管直径显着下降,血流量上升,心率则呈现先上升后下降的趋势。而上述化合物的暴露也导致心脏发育相关基因的转录水平变化,表明肾上腺受体靶标药物能够影响斑马鱼幼鱼的心血管系统发育。综上所述,肾上腺受体靶标药物能影响斑马鱼幼鱼的胚胎发育,干扰神经系统和心血管系统的发育和功能,并导致行为毒性。以上结果为全面准确揭示此类药物的生态毒性提供了科学依据。
曹海林[8]（2014）在《莱克多巴胺胶体金试纸条的研制》文中进行了进一步梳理莱克多巴胺是一种β2肾上腺素受体激动剂，当添加到饲料中，可以提高动物的瘦肉率。但是当人食用了含有超过一定剂量莱克多巴胺的动物组织后，就会对人体造成不同程度的伤害。目前，对莱克多巴胺的检测主要是采用色谱法，但色谱法的前处理过程繁琐、成本高、需要专门的检测仪器，这不适合大规模的推广。故建立一个高效、快速的莱克多巴胺检测方法具有重要的现实意义。本实验采用柠檬酸三钠还原的方法来制备胶体金。采用单因素试验，通过改变柠檬酸三钠加入量﹑加热时间、转速和反应物的添加顺序，对胶体金制备工艺进行优化，结果发现在1％柠檬酸三钠溶液加入量为1.8mL、加热时间10min、转速为300r/min条件下，采用柠檬酸三钠加入到氯金酸的添加顺序可以制备质量较好的胶体金溶液。采用紫外可见光谱法确定胶体金颗粒的粒径和均一度。通过实验发现，所制备的胶体金粒径大约在18.4nm，通过观察胶体金溶液的可见光谱，发现胶体金的均一度也比较好。优化了免疫胶体金的制备条件，最佳蛋白标记量为13.18μg/mL，最适标记pH为8.0，选择终浓度为1％BSA为稳定剂。对比了不同配方的重悬液，确定了配方2为含有1％BSA、1％蔗糖、0.1％Tween-20的磷酸盐缓冲液。优化了抗原和抗体的包被条件，抗原包被浓度为0.5mg/mL，二抗包被浓度为1.0mg/mL，金标稀释度为3倍，金标垫干燥条件为室温条件下45min，抗原包被条件为37℃，10min。对比了三种不同型号的金标垫（MA0270、GL0194和Ahlstrom8964），三种不同型号硝酸纤维素膜（Sartorius140、Millipore135和Pall Vivid170），四种不同型号的样品垫（GL-b01、GL-b02、GL-b03和GL-b04）、三种不同型号的吸水纸（HS5076、HS5080和HS5072）对试纸条性能的影响，最终选择金标垫的型号为MA0270，Millipore135硝酸纤维素膜的型号为Millipore135，样品垫的型号为GL-b01，吸水纸的型号为HS5072。试纸条的灵敏度为20ng/mL，交叉反应实验说明所制备的试纸条与克伦特罗、沙丁胺醇、肾上腺素无交叉反应。在室温下试纸条可以保存2个月以上，在不同批次和同一批次内重复性良好。对试纸条在实际检测中的表现进行了测试，样品经过简单的提取和除脂肪后，直接用于试纸条的测试，和传统的LC-MS的前处理方法相比较简便了很多。在实际检测过程中，对于浓度在20ng/mL以上的阳性样品都可以检出。
郑伟[9]（2014）在《莱克多巴胺人工抗原的制备及鉴定》文中提出莱克多巴胺（Ractopamine，RAC）是一种苯酚胺类β2肾上腺素受体激动剂，与“瘦肉精”盐酸克伦特罗一样具有促进营养再分配和生长的作用，因此被用作新型添加剂促进机体生长。由于莱克多巴胺具有在动物体内蓄积残留的特性，食用莱克多巴胺添加剂饲养的动物会引起人们不同程度的中毒反应，具体表现为骨骼肌收缩增加，引起肌肉震颤。在我国已经禁止其生产和销售，但是非法使用的现象仍时有发生。目前，越来越多的分析方法被用于检测RAC残留，例如利用酶联免疫吸附测定法（ELISA）对RAC残留进行初步筛查，再通过质谱或者色谱进行确认。与色谱法、质谱法、生物传感器法等药物残留检测方法相比，免疫学分析方法不需要昂贵的仪器，具有操作简单和可以进行高通量检测的优点，在RAC残留检测中发展迅速并已得到广泛的应用。本研究通过三种不同的制备方法获得莱克多巴胺人工抗原。其中采用1，4-丁二醚法（Linker法）制备RAC人工抗原，并把此方法制备的RAC-OVA作为包被原；此外，利用混合酸酐法制备RAC人工抗原，最终获得偶联比分别为8：1，17：1，23：1的RAC-BSA人工抗原；另外，本研究首次利用N’N-羰基二咪唑法一步制备RAC人工抗原，采用不同的溶剂得到浓度和偶联比不同的RAC-BSA人工抗原。采用物理学的方法（紫外光谱扫描和SDS-PAGE凝胶电泳）以及免疫学的方法（间接ELISA）鉴定人工抗原是否偶联成功。本研究利用三种不同制备方案成功获得RAC人工抗原，并首次利用N’N-羰基二咪唑法成功制备了RAC人工抗原，并获得效价约为1：6400的抗血清。为制备高特异性抗RAC单克隆抗体奠定了基础。
刘畅[10]（2013）在《食品中兽药残留高通量筛查与检测平台的建立及膳食暴露评估研究》文中研究表明近年来，国内外食品安全事故层出不穷，食品安全已经成为全社会广泛关注的重要的公共安全问题。动物养殖过程中出现了使用替代品种代替重点监管兽药和不同类别、功效的兽药同时饲喂的新现象，动物源性食品中出现了多类别兽药、多残留的新问题，给健康带来极大的隐患。本研究以食品中兽药残留为研究对象，利用分析技术和膳食暴露评估技术，从技术层面对食品安全问题进行了研究。为分析和评价由于兽药残留引起的食品安全问题提供了新的思路。本课题研究内容主要由以下部分组成：第一部分，主要是分析了我国食品安全现状与产生原因、新形势下食品安全问题面临的挑战以及食品安全相关概念。对食品兽药残留和关键检测技术的相关文献进行了综述。介绍了本课题的意义和研究方法。第二部分，建立了基于高效液相色谱-高分辨飞行时间质谱联用技术对猪肉中β-兴奋剂、镇静剂、磺胺三大类73种兽药残留的高通量快速筛查平台。样品经提取，分散固相法萃取净化，用液相色谱-飞行时间质谱法测定，同位素内标定量。该方法前处理简单，选择性高，灵敏度好，适宜筛查猪肉中可能存在的多类药物残留。第三部分，建立了禽畜肉中抗病毒类药物的定量检测平台，包括禽肉中金刚烷胺残留量的测定及禽畜肉中利巴韦林残留量的测定。样品分别采用提取或酶解提取后，经固相萃取净化，用液相色谱串联四极杆线性离子阱质谱法测定，采用同位素内标法定量。检测平台中的两个方法均经过方法学验证，峰面积与浓度线性相关系数r>0.999，回收率均在80%以上。可作为禽畜肉中抗病毒药物的定量检测方法。第四部分，建立了猪肉和肝脏组织中同时测定20种β-兴奋剂残留的高通量检测平台。动物组织样本酶解提取后，经固相萃取柱萃取净化，用液相色谱串联三重四级杆质谱测定，采用同位素内标或外标法定量测定。方法学验证显示结果准确，适宜作为猪肉类食品中β-兴奋剂的高通量定量检测方法。用本方法对猪肉和猪肝中莱克多巴胺进行检测，并对结果进行统计分析，采用国际通用的风险评估模式，从危害识别、危害特征描述、暴露评估和风险特征描述等方面对猪肉食品中莱克多巴胺残留进行了膳食暴露评估。结果为，猪肉类食品中莱克多巴胺残留对人体健康风险较低。第五部分，建立了禽肉中氯霉素残留的快速检测方法。动物组织样本经乙腈提取后，用正己烷除脂净化，浓缩后用液相色谱串联三重四级杆质谱测定，采用同位素内标法定量测定。经方法学验证，结果准确可靠，适宜作为禽肉中氯霉素残留的定量测定方法。应用本方法对禽肉中氯霉素残留进行检测，并对结果进行统计分析，采用国际通用的风险评估模式，从危害识别、危害特征描述、暴露评估和风险特征描述等方面对氯霉素残留进行了膳食暴露评估。结果为，禽肉中氯霉素残留产生致癌性风险较低，发生氯霉素临床不良反应的可能性较低。
二、莱克多巴胺对鼠的毒性研究（论文开题报告）
（1）论文研究背景及目的
此处内容要求：
首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景，再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题，并提出你的论文准备的观点或解决方法。
写法范例：
本文主要提出一款精简64位RISC处理器存储管理单元结构并详细分析其设计过程。在该MMU结构中,TLB采用叁个分离的TLB,TLB采用基于内容查找的相联存储器并行查找,支持粗粒度为64KB和细粒度为4KB两种页面大小,采用多级分层页表结构映射地址空间,并详细论述了四级页表转换过程,TLB结构组织等。该MMU结构将作为该处理器存储系统实现的一个重要组成部分。
（2）本文研究方法
调查法：该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。
观察法：用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。
实验法：通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。
文献研究法：通过调查文献来获得资料，从而全面的、正确的了解掌握研究方法。
实证研究法：依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。
定性分析法：对研究对象进行“质”的方面的研究，这个方法需要计算的数据较少。
定量分析法：通过具体的数字，使人们对研究对象的认识进一步精确化。
跨学科研究法：运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。
功能分析法：这是社会科学用来分析社会现象的一种方法，从某一功能出发研究多个方面的影响。
模拟法：通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。
三、莱克多巴胺对鼠的毒性研究（论文提纲范文）
（1）2014—2019年济南市市售畜肉中β-受体激动剂含量调查（论文提纲范文）
| 1 样品采集与检测 |
| 1.1 样品采集 |
| 1.2 监测项目 |
| 1.3 设备与材料 |
| 1.3.1 |
| 1.3.2 色谱柱 |
| 1.3.3 固相萃取柱 |
| 1.4 检测方法 |
| 1.5 统计学分析 |
| 2 结 果 |
| 2.1 检出基本情况 |
| 2.2 不同销售场所检出情况 |
| 2.3 不同动物畜肉检出情况 |
| 2.4 畜肉不同器官组织中检出剂残留情况 |
| 3 讨 论 |
（2）烟台市肉品中β-受体激动剂残留及其健康风险评估（论文提纲范文）
| 1 材料与方法 |
| 1.1 材料来源 |
| 1.2 主要试剂和仪器 |
| 1.2.1 试剂 |
| 1.2.2 仪器 |
| 1.3 试验方法 |
| 1.4 肉类中β-受体激动剂残留的健康风险评估方法 |
| 2 结果 |
| 2.1 肉类样品中4种β-受体激动剂类药物的监测 |
| 2.2 2016-2018年烟台市肉类中β-受体激动剂类药物的残留趋势分析 |
| 2.3 健康风险评价 |
| 3 讨论 |
（3）莱克多巴胺的危害及防范措施（论文提纲范文）
| 0 引言 |
| 1 莱克多巴胺的概况 |
| 2 莱克多巴胺残留的危害 |
| 3 存在问题 |
| 3.1 滥用药物 |
| 3.2 管理力度不到位 |
| 3.3 打击力度不强 |
| 3.4 广大消费者的食品质量安全意识和自我保护意识薄弱 |
| 3.5 检测方法滞后 |
| 4 防范措施 |
| 4.1 科普及宣传莱克多巴胺的知识 |
| 4.2 加强管理力度 |
| 4.3 研究安全的药品 |
| 4.4完善监督、检测体系 |
| 5小结 |
（4）肾上腺受体相关药物对青鳉鱼早期生命阶段的行为毒性研究（论文提纲范文）
| 摘要 |
| ABSTRACT |
| 第一章 引言 |
| 1.1 肾上腺受体相关药物的分类简介 |
| 1.1.1 肾上腺受体激动剂 |
| 1.1.2 肾上腺受体阻滞剂 |
| 1.2 实验模式动物 |
| 1.2.1 青鳉鱼 |
| 1.2.2 青鳉鱼在毒性测试中的应用 |
| 1.3 研究目的及内容 |
| 1.3.1 研究目的 |
| 1.3.2 研究内容 |
| 第二章 青鳉幼鱼游泳行为测试体系的建立 |
| 2.1 前言 |
| 2.2 材料和方法 |
| 2.2.1 实验材料 |
| 2.2.2 实验方法 |
| 2.3 结果分析 |
| 2.3.1 不同时间段对青鳉幼鱼运动的影响 |
| 2.3.2 孵化后的时间对青鳉运动的影响 |
| 2.3.3 光暗刺激对青鳉运动影响 |
| 2.3.4 青鳉雌雄幼鱼游泳的速度差异 |
| 2.3.5 乙醇和二甲基亚砜对青鳉幼鱼游泳速度的影响 |
| 2.4 讨论 |
| 2.5 结论 |
| 第三章 肾上腺受体相关药物对青鳉幼鱼行为毒性效应 |
| 3.1 前言 |
| 3.2 材料和方法 |
| 3.2.1 实验材料 |
| 3.2.2 实验方法 |
| 3.3 实验结果 |
| 3.3.1 RAC对青鳉鱼幼鱼光周期刺激下运动行为的影响 |
| 3.3.2 PRO对青鳉鱼幼鱼光周期刺激下运动行为的影响 |
| 3.4 讨论 |
| 3.5 结论 |
| 第四章 肾上腺受体相关药物对青鳉鱼神经毒性机制研究 |
| 4.1 前言 |
| 4.2 材料与方法 |
| 4.2.1 实验材料 |
| 4.2.2 实验方法 |
| 4.3 实验结果 |
| 4.3.1 RAC对青鳉幼鱼神经发育相关基因转录影响 |
| 4.3.2 PRO对青鳉鱼幼鱼神经发育相关基因转录影响 |
| 4.4 讨论 |
| 4.5 结论 |
| 结论和创新点 |
| 结论 |
| 创新点 |
| 展望 |
| 参考文献 |
| 致谢 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 |
（5）猪肉组织及尿液中莱克多巴胺的快速检测（论文提纲范文）
| 1 材料与方法 |
| 1.1 样品与试剂 |
| 1.2 仪器 |
| 1.3 样品前处理 |
| 1.3.1 ELISA样品 |
| 1.3.2 CMIA样品 |
| 1.4 样品检测 |
| 1.4.1 ELISA |
| 1.4.2 CMIA |
| 1.5 标准曲线绘制及莱克多巴胺浓度的计算 |
| 1.6 试剂盒性能检测 |
| 1.6.1 特异性 |
| 1.6.2 检测限 |
| 1.6.3 精密度和准确度 |
| 1.6.4 试剂盒与GC-MS检测结果比较 |
| 2 结果与分析 |
| 2.1 标准曲线 |
| 2.2 试剂盒性能 |
| 2.2.1 特异性 |
| 2.2.2 检测限 |
| 2.2.3 精密度和准确度 |
| 2.2.4 试剂盒与GC-MS法检测比较 |
| 3 结论 |
（6）基于二聚人工抗原的β-兴奋剂多残留免疫检测技术研究（论文提纲范文）
| 致谢 |
| 摘要 |
| Abstract |
| 1 绪论 |
| 1.1 β-兴奋剂 |
| 1.1.1 化学结构 |
| 1.1.2 理化性质 |
| 1.1.3 药物作用 |
| 1.1.4 残留危害 |
| 1.1.5 β-受体激动剂检测的研究现状 |
| 1.2 莱克多巴胺与克伦特罗概述 |
| 1.2.1 RAC和CLE危害及限量标准 |
| 1.2.2 检测方法 |
| 1.3 多残留免疫检测方法及研究进展 |
| 1.3.1 多残留免疫检测技术 |
| 1.3.4 多残留免疫检测技术研究进展 |
| 1.4 主要研究内容、意义及研究思路 |
| 1.4.1 研究内容 |
| 1.4.2 研究意义 |
| 1.4.3 研究思路 |
| 2 克伦特罗-莱克多巴胺二聚人工抗原的合成与鉴定 |
| 2.1 材料与方法 |
| 2.1.1 材料 |
| 2.2 人工抗原的合成 |
| 2.2.1 莱克多巴胺的氨基衍生物的合成 |
| 2.2.2 莱克多巴胺（RAC）人工抗原的合成 |
| 2.2.3 克伦特罗（CLE）人工抗原的合成 |
| 2.2.4 二聚人工抗原（CLE-RAC）的合成 |
| 2.3 结果与讨论 |
| 2.3.1 莱克多巴胺氨基衍生物的合成鉴定 |
| 2.3.2 紫外光谱扫描鉴定 |
| 2.3.3 人工抗原合成的SDS-PAGE鉴定 |
| 2.4 小结 |
| 3 基于克伦特罗-莱克多巴胺二聚人工抗原的单克隆抗体制备与鉴定 |
| 3.1 材料与方法 |
| 3.1.1 材料 |
| 3.1.2 方法 |
| 3.2 结果与讨论 |
| 3.2.1 小鼠抗血清鉴定 |
| 3.2.2 单克隆抗体的制备 |
| 3.3 小结 |
| 4 基于克伦特罗-莱克多巴胺二聚人工抗原的ELISA检测方法的建立 |
| 4.1 材料与方法 |
| 4.1.1 材料 |
| 4.1.2 方法 |
| 4.2 结果与讨论 |
| 4.2.1 单克隆抗体与二聚人工抗原最佳工作浓度确定 |
| 4.2.2 灵敏度 |
| 4.2.3 特异性 |
| 4.2.4 最低检测限和最低定量限 |
| 4.2.5 添加回收试验 |
| 4.2.6 LC-MS/MS比对 |
| 4.3 小结 |
| 5 RAC-CLE胶体金试纸条的制备 |
| 5.1 材料与方法 |
| 5.1.1 材料 |
| 5.1.2 方法 |
| 5.2 结果与讨论 |
| 5.2.1 胶体金的鉴定 |
| 5.2.2 金标试纸条的制备 |
| 5.2.3 最佳配对二聚人工抗原的确定 |
| 5.2.4 试纸条灵敏度 |
| 5.2.5 试纸条特异性 |
| 5.2.6 金标试纸条检测时间 |
| 5.3 小结 |
| 6 结论与展望 |
| 6.1 结论 |
| 6.2 创新点 |
| 6.3 展望 |
| 参考文献 |
| 作者简介 |
（7）肾上腺受体相关药物对斑马鱼的毒性研究（论文提纲范文）
| 摘要 |
| ABSTRACT |
| 第一章 引言 |
| 1.1 肾上腺系统 |
| 1.1.1 肾上腺系统简介 |
| 1.1.2 肾上腺素受体 |
| 1.1.3 儿茶酚胺(CAs) |
| 1.1.4 鱼的肾上腺系统的分布 |
| 1.2 肾上腺受体类药物 |
| 1.2.1 肾上腺素受体阻滞剂 |
| 1.2.2 肾上腺素受体激动剂 |
| 1.3 实验模式动物 |
| 1.3.1 斑马鱼 |
| 1.3.2 斑马鱼行为在毒性测试中的应用 |
| 1.4 研究目的及内容 |
| 1.4.1 研究目的 |
| 1.4.2 研究内容 |
| 第二章 肾上腺受体相关药物对斑马鱼的胚胎毒性 |
| 2.1 前言 |
| 2.2 材料与方法 |
| 2.2.1 实验材料 |
| 2.2.2 实验方法 |
| 2.3 实验结果 |
| 2.3.1 MOX对斑马鱼胚胎发育的影响 |
| 2.3.2 PRO对斑马鱼胚胎发育的影响 |
| 2.3.3 PRO对映体对斑马鱼胚胎发育的影响 |
| 2.3.4 RAC对斑马鱼胚胎发育的影响 |
| 2.4 讨论 |
| 2.5 结论 |
| 第三章 肾上腺相关药物对斑马鱼的行为毒性效应 |
| 3.1 前言 |
| 3.2 材料与方法 |
| 3.2.1 实验材料 |
| 3.2.2 实验方法 |
| 3.3 实验结果 |
| 3.3.1 MOX对斑马鱼幼鱼光暗周期刺激下运动行为的影响 |
| 3.3.2 PRO对斑马鱼幼鱼光暗周期刺激下运动行为的影响 |
| 3.3.3 PRO对映体对斑马鱼幼鱼光暗周期刺激下运动行为的影响 |
| 3.3.4 RAC对斑马鱼幼鱼光暗周期刺激下运动行为的影响 |
| 3.4 讨论 |
| 3.5 结论 |
| 第四章 肾上腺相关药物对斑马鱼神经毒性机制研究 |
| 4.1 前言 |
| 4.2 材料与方法 |
| 4.2.1 实验材料 |
| 4.2.2 实验方法 |
| 4.3 实验结果 |
| 4.3.1 斑马鱼乙酰胆碱酯酶活性 |
| 4.3.2 斑马鱼乙酰胆碱酯酶与神经发育相关基因转录水平的变化 |
| 4.4 讨论 |
| 4.5 结论 |
| 第五章 肾上腺受体相关药物对斑马鱼心脏毒性机制研究 |
| 5.1 前言 |
| 5.2 材料与方法 |
| 5.2.1 实验材料 |
| 5.2.2 实验方法 |
| 5.3 实验结果 |
| 5.3.1 斑马鱼血管直径、血流量、心率测量 |
| 5.3.2 斑马鱼心脏相关基因变化 |
| 5.4 讨论 |
| 5.5 结论 |
| 结论和创新点 |
| 结论 |
| 创新点 |
| 参考文献 |
| 致谢 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 |
（8）莱克多巴胺胶体金试纸条的研制（论文提纲范文）
| 摘要 |
| Abstract |
| 主要符号表 |
| 第1章 前言 |
| 1.1 莱克多巴胺概述 |
| 1.1.1 莱克多巴胺的化学结构和理化特性 |
| 1.1.2 莱克多巴胺的药理作用及其作用机理 |
| 1.1.3 莱克多巴胺残留的毒性作用 |
| 1.1.4 莱克多巴胺国内外的应用现状 |
| 1.2 莱克多巴胺检测方法的研究进展 |
| 1.2.1 色谱分析法 |
| 1.2.2 免疫分析法（IA） |
| 1.3 胶体金免疫层析技术 |
| 1.3.1 胶体金的性质和特点 |
| 1.3.2 胶体金的制备 |
| 1.3.3 免疫胶体金的制备和纯化 |
| 1.3.4 胶体金免疫层析技术的原理 |
| 1.3.5 胶体金免疫技术在快速检测中的应用 |
| 1.4 论文研究目的和内容 |
| 1.4.1 论文研究目的 |
| 1.4.2 论文研究的主要内容 |
| 1.5 论文创新点 |
| 第2章 材料与方法 |
| 2.1 材料和仪器 |
| 2.1.1 主要试剂与材料 |
| 2.1.2 主要仪器设备 |
| 2.2 试验方法 |
| 2.2.1 胶体金溶液的制备 |
| 2.2.2 胶体金质量的鉴定 |
| 2.2.3 金标抗体的制备与鉴定 |
| 2.2.4 抗原和抗体条件的选择 |
| 2.2.5 试纸条材料的选择 |
| 2.2.6 试纸条的组装 |
| 2.2.7 试纸条的性能测试 |
| 2.2.8 试纸条在实际检测中的应用 |
| 第3章 结果与讨论 |
| 3.1 影响胶体金质量因素的探讨 |
| 3.1.1 柠檬酸三钠加入量对胶体金质量的结果 |
| 3.1.2 转速对胶体金质量的影响 |
| 3.1.3 加热时间对胶体金质量的影响实验结果 |
| 3.1.4 反应物不同添加顺序对胶体金质量的影响结果 |
| 3.2 胶体金质量的鉴定 |
| 3.3 金标抗体的制备与鉴定 |
| 3.3.1 最佳蛋白标记量的测定 |
| 3.3.2 最适标记 pH 值的确定 |
| 3.3.3 重悬液的选择 |
| 3.3.4 金标抗体活性的鉴定 |
| 3.4 抗原和抗体条件的选择 |
| 3.4.1 抗原、二抗浓度选择 |
| 3.4.2 金标抗体溶液稀释度的选择结果 |
| 3.4.3 金标垫干燥条件的选择 |
| 3.4.4 抗原包被条件的选择结果 |
| 3.5 试纸条材料的选择 |
| 3.5.1 金标接合垫的选择 |
| 3.5.2 NC 膜的选择 |
| 3.5.3 样品垫选择 |
| 3.5.4 吸水纸选择 |
| 3.6 试纸条的性能测试结果 |
| 3.6.1 试纸条的灵敏度试验 |
| 3.6.2 试纸条的交叉反应试验 |
| 3.6.3 试纸条稳定性试验 |
| 3.6.4 试纸条重复性试验 |
| 3.7 试纸条在实际样品中的测试结果 |
| 3.8 讨论 |
| 第4章 结论与展望 |
| 4.1 结论 |
| 4.2 展望 |
| 致谢 |
| 参考文献 |
（9）莱克多巴胺人工抗原的制备及鉴定（论文提纲范文）
| 摘要 |
| Abstract |
| 目录 |
| 第1章 文献综述 |
| 1.1 兽药及兽药残留现状 |
| 1.2 兽药残留的危害 |
| 1.2.1 一般性毒性 |
| 1.2.2 特殊性毒性 |
| 1.2.3 激素样毒性 |
| 1.3 兽药残留的原因及控制 |
| 1.3.1 兽药残留的原因 |
| 1.3.2 兽药残留的控制 |
| 1.4 莱克多巴胺简介 |
| 1.4.1 莱克多巴胺的理化性质 |
| 1.4.2 莱克多巴胺的体内代谢过程 |
| 1.4.3 莱克多巴胺的应用 |
| 1.4.4 莱克多巴胺的残留危害及现状 |
| 1.5 莱克多巴胺检测方法 |
| 1.5.1 理化检测法 |
| 1.5.2 免疫学分析法 |
| 1.5.3 传感器法 |
| 1.6 研究内容与目的 |
| 第2章 莱克多巴胺人工抗原的制备及鉴定 |
| 2.1 试验材料 |
| 2.1.1 主要仪器 |
| 2.1.2 试剂 |
| 2.1.3 主要试剂配制 |
| 2.1.4 试验动物 |
| 2.2 方法 |
| 2.2.1 1,4-丁二醚法制备 RAC 人工抗原及其鉴定 |
| 2.2.2 混合酸酐法制备 RAC 人工抗原及其鉴定 |
| 2.2.3 N'N-羰基二咪唑法制备 RAC 人工抗原及其鉴定 |
| 2.3 结果与分析 |
| 2.3.1 1,4-丁二醚法制备 RAC 人工抗原鉴定结果 |
| 2.3.2 混合酸酐法制备 RAC 人工抗原鉴定结果 |
| 2.3.3 N'N-羰基二咪唑法制备 RAC 人工抗原鉴定结果 |
| 2.4 讨论 |
| 2.4.1 人工抗原制备方法的选择 |
| 2.4.2 人工抗原载体和交联剂的选择 |
| 2.5 小结 |
| 第3章 偶联比对抗原免疫效果的影响 |
| 3.1 试验材料 |
| 3.2 方法 |
| 3.2.1 混合酸酐法制备 RAC 人工抗原 |
| 3.2.2 混合酸酐法制备 RAC 人工抗原的鉴定 |
| 3.2.3 人工抗原偶联比的测定 |
| 3.3 结果与分析 |
| 3.3.1 偶联比测定结果 |
| 3.3.2 不同偶联比 RAC 人工抗原鉴定结果 |
| 3.4 讨论 |
| 3.4.1 偶联比的选择 |
| 3.4.2 免疫程序选择 |
| 3.5 小结 |
| 结论 |
| 参考文献 |
| 附录：英文缩写词汇表 |
| 致谢 |
| 硕士期间发表论文、专利目录及研究成果 |
（10）食品中兽药残留高通量筛查与检测平台的建立及膳食暴露评估研究（论文提纲范文）
| 摘要 |
| Abstract |
| 缩略语 |
| 第一章 前言 |
| 1.1. 引言 |
| 1.1.1. 食品安全现状 |
| 1.1.2. 食品安全问题产生的原因 |
| 1.1.3. 食品安全问题面临的挑战 |
| 1.1.3.1. 监管滞后，预防能力不足 |
| 1.1.3.2. 替代品种增加，兽药残留暴露多样化 |
| 1.1.3.3. 标准滞后，缺少相应检验标准和方法 |
| 1.1.3.4. 风险评估起步晚，风险防控能力不足 |
| 1.2. 基本概念 |
| 1.2.1. 食品安全 |
| 1.2.2. 食品安全风险 |
| 1.2.3. 食品安全风险评估 |
| 1.2.4. 膳食暴露评估 |
| 1.3. 文献综述 |
| 1.3.1. 液相色谱高分辨质谱简介 |
| 1.3.2. Q-TOF-MS |
| 1.3.3. 液相色谱-质谱简介 |
| 1.3.4. 液相色谱质谱在兽药残留分析中的应用 |
| 1.3.4.1. 液相色谱高分辨质谱在农、兽药筛选中应用 |
| 1.3.4.2. 液相色谱质谱在兽药分析中的应用 |
| 1.4. 研究意义 |
| 1.5. 研究思路 |
| 1.5.1. 技术路线图 |
| 1.5.2. 建立多类兽药残留高通量筛查平台 |
| 1.5.3. 建立多兽药残留高通量定量检测平台 |
| 1.5.4. 建立兽药残留检测方法 |
| 1.5.5. 兽药残留膳食暴露评估 |
| 1.6. 创新性 |
| 第二章 猪肉兽药残留高通量筛查平台的建立 |
| 2.1. 引言 |
| 2.2. 实验部分 |
| 2.2.1. 材料与方法 |
| 2.2.1.1. 对照品与试剂 |
| 2.2.1.2. 标准溶液的配制 |
| 2.2.1.3. 样品处理 |
| 2.2.2. 仪器及条件 |
| 2.2.2.1. 仪器 |
| 2.2.2.2. 液相色谱条件 |
| 2.2.2.3. 质谱条件 |
| 2.3. 结果与讨论 |
| 2.3.1. 猪肉兽药残留高通量筛查平台的建立 |
| 2.3.1.1. 前处理优化 |
| 2.3.1.2. 液相色谱-飞行时间质谱 |
| 2.3.1.3. 精确相对分子质量数据库的建立 |
| 2.3.2. 方法学验证 |
| 2.3.2.1. 待测试样的选择 |
| 2.3.2.2. 检测限 |
| 2.3.2.3. 线性范围 |
| 2.3.2.4. 精密度试验 |
| 2.3.2.5. 回收率试验 |
| 2.3.2.6. 方法应用 |
| 2.4. 本章小结 |
| 第三章 禽畜肉中抗病毒药物检测平台的建立 |
| 3.1. 禽肉中金刚烷胺的检测方法 |
| 3.1.1. 引言 |
| 3.1.2. 实验部分 |
| 3.1.2.1. 材料与方法 |
| 3.1.2.1.1. 对照品与试剂 |
| 3.1.2.1.2. 材料 |
| 3.1.2.1.3. 标准溶液的配制 |
| 3.1.2.1.4. 样品处理 |
| 3.1.2.2. 仪器及条件 |
| 3.1.2.2.1. 仪器 |
| 3.1.2.2.2. 液相色谱条件 |
| 3.1.2.2.3. 质谱条件 |
| 3.1.3. 结果与讨论 |
| 3.1.3.1. 检测方法的选择 |
| 3.1.3.2. 供试品溶液制备的研究 |
| 3.1.3.2.1. 提取溶剂的选择 |
| 3.1.3.2.2. 固相萃取柱选择 |
| 3.1.3.2.3. 重组溶剂的选择 |
| 3.1.3.2.4. 分析方法的选择 |
| 3.1.3.3. 液相色谱－串联质谱条件的确定 |
| 3.1.3.3.1. 色谱柱的选择 |
| 3.1.3.3.2. 流动相的选择 |
| 3.1.3.3.3. 质谱条件的选择 |
| 3.1.3.4. 定量离子及定性离子的选择 |
| 3.1.4. 方法学验证 |
| 3.1.4.1. 待测试样的选择 |
| 3.1.4.2. 线性范围 |
| 3.1.4.3. 重复性试验 |
| 3.1.4.3.1. 空白添加法 |
| 3.1.4.3.2. 阳性样本平行测定法 |
| 3.1.4.4. 准确度（回收率）试验 |
| 3.1.4.5. 干扰试验 |
| 3.1.4.5.1. 结构近似化合物共存干扰试验 |
| 3.1.4.5.2. 多来源空白样本干扰试验 |
| 3.1.4.5.3. 多种常见兽药残留共存干扰试验 |
| 3.1.4.6. 检测限 |
| 3.1.4.7. 典型性图谱 |
| 3.1.4.8. 方法应用 |
| 3.2. 禽畜肉中利巴韦林的检测方法 |
| 3.2.1. 引言 |
| 3.2.2. 实验部分 |
| 3.2.2.1. 材料与方法 |
| 3.2.2.1.1. 对照品与试剂 |
| 3.2.2.1.2. 材料 |
| 3.2.2.1.3. 标准溶液的配制 |
| 3.2.2.1.4. 样品处理 |
| 3.2.2.2. 仪器及条件 |
| 3.2.2.2.1. 仪器 |
| 3.2.2.2.2. 液相色谱条件 |
| 3.2.2.2.3. 质谱条件 |
| 3.2.3. 结果与讨论 |
| 3.2.3.1. 检测方法的选择 |
| 3.2.3.2. 供试品溶液制备的研究 |
| 3.2.3.2.1. 酶解的选择 |
| 3.2.3.2.2. 固相萃取柱选择 |
| 3.2.3.2.3. 分析方法的选择 |
| 3.2.3.3. 液相色谱－串联质谱条件的确定 |
| 3.2.3.3.1. 色谱柱的选择 |
| 3.2.3.3.2. 流动相的选择 |
| 3.2.3.3.3. 质谱条件的选择 |
| 3.2.3.3.4. 定量离子及定性离子的选择 |
| 3.2.4. 方法学验证 |
| 3.2.4.1. 选择性 |
| 3.2.4.2. 最低检测限 |
| 3.2.4.3. 线性范围 |
| 3.2.4.4. 回收率试验 |
| 3.2.4.5. 精密度试验 |
| 3.2.4.6. 方法应用 |
| 3.3. 本章小结 |
| 第四章 猪肉中β-兴奋剂残留高通量检测平台的建立及莱克多巴胺膳食暴露评估 |
| 4.1. 引言 |
| 4.2. 实验部分 |
| 4.2.1. 材料与方法 |
| 4.2.1.1. 对照品与试剂 |
| 4.2.1.2. 标准溶液的配制 |
| 4.2.1.3. 样品处理 |
| 4.2.2. 仪器及条件 |
| 4.2.2.1. 仪器 |
| 4.2.2.2. 液相色谱条件 |
| 4.2.2.3. 质谱条件 |
| 4.2.3. 方法学验证 |
| 4.3. 结果与讨论 |
| 4.3.1. 实验条件的选择 |
| 4.3.2. CCα 和 CCβ |
| 4.3.3. 标准曲线 |
| 4.3.4. 回收率试验 |
| 4.3.5. 重复性试验 |
| 4.3.6. 方法应用 |
| 4.4. 猪肉类食品莱克多巴胺暴露评估 |
| 4.4.1. 危害识别 |
| 4.4.1.1. RCT 的化学结构 |
| 4.4.1.2. RCT 的理化特性 |
| 4.4.2. 危害特征描述 |
| 4.4.2.1. 体内过程 |
| 4.4.2.2. 代谢过程 |
| 4.4.2.3. 毒性作用 |
| 4.4.2.4. 中毒的临床症状 |
| 4.4.3. 含量分布 |
| 4.4.4. 暴露量评估 |
| 4.4.4.1. 猪肝猪肾 |
| 4.4.4.2. 猪肉 |
| 4.4.4.3. 所有猪肉类食品 |
| 4.4.5. 风险特征描述 |
| 4.4.6. 不确定度分析 |
| 4.4.6.1. 膳食消费量的不确定性 |
| 4.4.6.2. 暴露量的不确定性 |
| 4.4.6.3. 人体危害的不确定性 |
| 4.4.7. 风险管理策略与建议 |
| 4.5. 本章小结 |
| 第五章 鸡鸭肉中氯霉素残留检测方法的建立及膳食暴露评估 |
| 5.1. 引言 |
| 5.2. 实验部分 |
| 5.2.1. 材料与方法 |
| 5.2.1.1. 对照品与试剂 |
| 5.2.1.2. 标准溶液的配制 |
| 5.2.1.3. 样品处理 |
| 5.2.2. 仪器及条件 |
| 5.2.2.1. 仪器 |
| 5.2.2.2. 液相色谱条件 |
| 5.2.2.3. 质谱条件 |
| 5.3. 结果与讨论 |
| 5.3.1. 样品前处理 |
| 5.3.2. 方法学验证 |
| 5.3.2.1. 最低检测限 |
| 5.3.2.2. 标准曲线 |
| 5.3.2.3. 回收率试验 |
| 5.3.2.4. 精密度试验 |
| 5.3.2.5. 方法应用 |
| 5.4. 鸡鸭肉中氯霉素类药物残留风险评估 |
| 5.4.1. 危害识别和危害特征描述 |
| 5.4.1.1. CAP 的化学结构和理化性质 |
| 5.4.1.2. CAP 的使用及其作用机理 |
| 5.4.1.3. CAP 体内代谢机理 |
| 5.4.1.4. CAP 的不良反应和毒性 |
| 5.4.1.5. 流行病学特征 |
| 5.4.2. 暴露评估 |
| 5.4.2.1. 含量分布 |
| 5.4.2.2. 暴露量评估 |
| 5.4.2.2.1. MOE 评估 |
| 5.4.2.2.2. MOS 评估 |
| 5.4.3. 风险特征描述 |
| 5.4.3.1. MOE 评估 |
| 5.4.3.2. MOS 评估 |
| 5.4.4. 风险评估的不确定度分析 |
| 5.4.4.1. 膳食消费量的不确定性 |
| 5.4.4.2. 暴露量的不确定性 |
| 5.4.4.3. 人体危害的不确定性 |
| 5.4.4.4. 评估过程的不确定性 |
| 5.4.5. 风险管理建议 |
| 5.4.5.1. 对监管部门的建议 |
| 5.4.5.2. 对行业管理的建议 |
| 5.5. 本章小结 |
| 参考文献 |
| 全文总结 |
| 在读博士学位期间发表论文 |
| 致谢 |
四、莱克多巴胺对鼠的毒性研究（论文参考文献）
- [1]2014—2019年济南市市售畜肉中β-受体激动剂含量调查[J]. 李士凯,孙婷,张鑫,孟中华,刘仲. 实用预防医学, 2020(08)
- [2]烟台市肉品中β-受体激动剂残留及其健康风险评估[J]. 王志昱,张晓瑜,张艺,孙兆鹏,王乙惠,张桂芳. 中国兽医杂志, 2020(05)
- [3]莱克多巴胺的危害及防范措施[J]. 何资颖,宋小云,王琤韡. 江西饲料, 2017(05)
- [4]肾上腺受体相关药物对青鳉鱼早期生命阶段的行为毒性研究[D]. 徐文彬. 浙江工业大学, 2016(05)
- [5]猪肉组织及尿液中莱克多巴胺的快速检测[J]. 党娟,李平,牛治存,王大敏,何国书,冯才伟. 贵州农业科学, 2016(08)
- [6]基于二聚人工抗原的β-兴奋剂多残留免疫检测技术研究[D]. 刘啊敏. 中国计量大学, 2016(04)
- [7]肾上腺受体相关药物对斑马鱼的毒性研究[D]. 任琳. 浙江工业大学, 2016(05)
- [8]莱克多巴胺胶体金试纸条的研制[D]. 曹海林. 集美大学, 2014(01)
- [9]莱克多巴胺人工抗原的制备及鉴定[D]. 郑伟. 郑州大学, 2014(02)
- [10]食品中兽药残留高通量筛查与检测平台的建立及膳食暴露评估研究[D]. 刘畅. 第二军医大学, 2013(05)